-
[size=2][color=Black][b]我用20v70min半干电转后,胶染色仍然不完全,不知一般是多少?(145KD,另一个是45KD)[/b][/color][/size],[size=2][color=Black][font
2013年10月26日发布人:skytree
-
[size=2][color=Black]各位大侠99偶吧!
本人暑假在四十几度高温条件下做WB.组织蛋白上样每孔200ug,大约20ul/孔,电泳80V跑出浓缩胶,100V分离胶至底部,切胶约3*7CM2,伯乐半干转膜仪(250V
2013年07月10日发布人:misswu61
-
[size=2][color=Black]
最近刚又湿转改为干转,原先师姐的条件是固定60V,75mA,1小时,她作得挺好的。师姐走后,我用她原来的条件,总是发现正极的滤纸焦黄焦黄的,膜也烤糊了,ECL显色背景很厉害,而且有些指标
2014年03月03日发布人:is2011
-
检测不到了。怎样提高转印效率呢?[/color][/size],[size=2][color=Black]
胶的厚度是1.5mm[/color][/size],[size=2][color=Black]
换半干试试吧,效果可能会
2014年01月14日发布人:chenshuanhe
-
[size=2][color=Black]
请教各位高手,我正在做wester blot 用的是半干转法,在转膜的时候预染Marker不能转移到NC膜上面,不知道是出了什么问题。转移缓冲液是按照分子克隆书上的配方配的,调节了PH值7。5
2014年04月19日发布人:小螺号
-
[size=2][color=Black]
我正准备做western,目的片断171--195kb,用多大浓度的分离胶好?半干转的条件?请各位支招?多谢![/color][/size],[size=2][color=Black]
我
2014年04月17日发布人:vvmmoy
-
[size=2][color=Black][b]
各位大侠99偶吧!
本人暑假在四十几度高温条件下做WB.组织蛋白上样每孔200ug,大约20ul/孔,电泳80V跑出浓缩胶,100V分离胶至底部,切胶约3*7CM2,伯乐半干转膜仪
2013年11月09日发布人:coolcool
-
呢?
我的转膜条件是:
半干转印,恒流0.8mA/cm2, 30-40min
转膜缓冲液是按照分子克隆配的,没有加SDS。[/font][/color][/size],[size=2][color=Black]
1-2MA/CM2
2014年04月15日发布人:8964357
-
[size=2][color=Black][b]
半干转膜,小分子量(40-60KD),恒流,电流为面积*2.5,时间30min,效果很好!但是大分子量(140-220KD),恒流,电流也是面积*2.5,时间为1小时,没有看见条带,包括
2013年08月10日发布人:cj_mondy
-
[size=2][color=Black][font=Impact]
半干转膜,小分子量(40-60KD),恒流,电流为面积*2.5,时间30min,效果很好!但是大分子量(140-220KD),恒流,电流也是面积*2.5,时间为1小时
2013年11月30日发布人:cj_mondy